ПРИМЕНЕНИЕ ДОТ-ИММУНОАНАЛИЗА ДЛЯ ИНДИКАЦИИ РАБИЧЕСКОГО АНТИГЕНА В ПАТОЛОГИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ
https://doi.org/10.25690/VETPAT.2021.31.40.007
Аннотация
Ключевые слова
антиген,
бешенство,
дот-иммуноанализ,
патологический материал,
иммуноферментный анализ,
чувствительность,
специфичность
Об авторах
Р. М. Ахмадеев
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
А. Ф. Арсланова
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
Н. Р. Мифтахов
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
Ш. М. Насыров
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
М. А. Ефимова
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
И. И. Самерханов
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Россия
Россия
Список литературы
1. Mahadevan A. Perspectives in Diagnosis and Treatment of Rabies Viral Encephalitis / A. Mahadevan, M. S. Suja, R. S. Mani, S. K. Shankar // Insights from Pathogenesis. Neurotherapeutics. - 2016. - 13 (3), 477-92. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/ 10.1007/s13311-016-0452-4
2. Lйchenne M. Validation of a Rapid Rabies Diagnostic Tool for Field Surveillance in Developing Countries / M. Lйchenne, K. Naпssengar, A. Lepelletier, I. O. Alfaroukh, H. Bourhy // PLoS Negl Trop Dis. - 2016. - 10 (10): e0005010. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/10.1371/journal. pntd.0005010
3. Smith J. Case report: Rapid ante-mortem diagnosis of a human case of rabies imported into the UK from the Philippines / J. Smith, L. McElhinney, G. Parsons, N. Brink [et al.] // J. Med. Virol. - 2003. - 69 (1). - P. 150-155. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/ 10.1002/jmv.10253
4. Chacko K. Diagnostic difficulties in human rabies: A case report and review of the literature / K. Chacko, R. T. Parakadavathu, M. Al-Maslamani, P. A. Nair [et al.] // Qatar Med. J. - 2016. - (2):15. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/10.5339/ qmj.2016.15
5. Larghi O. Methods for accelerating the fluorescentantibody test for rabies diagnosis / O. Larghi, E. Jimenez // Appl Microbiol. - 1971. - 21 (4). - P. 611- 614
6. Realegeno S. An ELISA-based method for detection of rabies virus nucleoprotein-specific antibodies in human antemortem samples / S. Realegeno, M. Niezgoda, P. A. Yager, A. Kumar [et al.] // PLoS One. - 2018. - 13 (11): e0207009. - Ре жим доступа к журналу: https://doi.org/10.1371/ journal. pone.0207009
7. Webster W. A. The mouse inoculation test in rabies diagnosis: early diagnosis in mice during the incubation period / W. A. Webster, G. A. Casey, K. M. Charlton // Can. J. Comp. Med. - 1976. - 40 (3). - P. 322-325
8. Hamir A. N. Immunoperoxidase test for rabies: utility as a diagnostic test / A. N. Hamir, S. Moser // J. Vet. Diagn. Invest. - 1994. - 6 (2). - P. 148- 200. - Режим доступа к журналу: https://doi.org /10.1177/104063879400600203
9. Недосеков В. В. Сравнительная оценка методов лабораторной диагностики бешенства / В. В. Не досеков // Ветеринарная патология. - 2002. - № 1. - С. 41-47
10. Sumi S. Assessment of four recombinant mycobacterial antigens as serodiagnostic markers for pulmonary tuberculosis / S. Sumi, G. K. Madhavilatha, S. Mundayoor, A. Mathai, V. V. Radhakrishnan // Journal of Clinical Medicine and Research. - 2009. - № 1 (3). - P. 35-40. - Ре жим доступа к журналу: https://doi.org/10.5897/ JCMR.9000012
11. Storey C. C. Immune dot blot technique for diagnosing infection with Chlamydia trachomatis / C. C. Storey, G. Mearns, S. J. Richmond // Genitourinary Medicine. - 1987. - № 63 (6). - P. 375-379. - Режим доступа к журналу: https://doi. org /10.1136/sti.63.6.375
12. Gentilomi G. Dot immunoperoxidase assay for detection of parvovirus B19 antigens in serum samples / G. Gentilomi, M. Musiani, M. Zerbini, G. Gallinella [et al.] // J. Clin. Microbiol. - 1997. - № 35 (6). - P. 1575-1578
13. Reina J. Evaluation of a new dot blot enzyme immunoassay (directigen flu A+B) for simultaneous and differential detection of influenza a and B virus antigens from respiratory samples / J Reina, E. Padilla, F. Alonso, E. R. De Gopegui [et al.] // J. Clin. Microbiol. - 2002. - № 40 (9):3515-7. - Ре жим доступа к журналу: https://doi.org/10.1128/ jcm.40.9.3515-3517.2002
14. Falconar A. K. I. A simple, inexpensive, robust and sensitive dot-blot assay for equal detection of the nonstructural-1 glycoprotein of all dengue virus serotypes / A. K. I. Falconar, C. M. E. Romero-Vivas // Virol. J. - 2013. - № 10:126. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/10.1186/1743-422X-10-126
15. Oprandy J. J. Evaluation of performance parameters of a membrane-based dot immunoassay for meningococcal polysaccharide / J. J. Oprandy, J. E. Sippel // J Clin Microbiol. - 1989. - № 27 (1):74- 7. - Режим доступа к журналу: https://doi.org/ 10.1128/JCM.27.1.74-77.1989
16. Nadala C. Dot-blot nitrocellulose enzyme immunoassays for the detection of white-spot virus and yellow-head virus of penaeid shrimp / C. Nadala, P. C. Loh // Journal of Virological Methods. - 2000. - № 84 (2):175-9. - Режим доступа к журна лу: https://doi.org/10.1016/ S0166-0934(99)00140-8
17. Madhusudana S. N. Rapid diagnosis of rabies in humans and animals by a dot blot enzyme immunoassay / S. N. Madhusudana, J. P. V. Paul, V. K. Abhilash, M. S. Suja // Int. J. Infect. Dis. - 2004. - № 8 (6):339-45. - Режим доступа: https://doi. org/10.1016/ j.ijid.2004. 02.006
18. Jahn R. A quantitative dot-immunobinding assay for proteins using nitrocellulose membrane filters / R. Jahn, W. Schiebler, P. Greengard // Proc. Natl. Acad. Sci. - USA. - 1983. - No. 81. - P. 1684-1687
19. Tian G. Quantitative dot blot analysis (QDB), a versatile high throughputimmunoblot method / G. Tian, F. Tang, C. Yang // Oncotarget, Advance Publications. - 2017. - No. 8 (35). - Режим досту па к журналу: https://doi.org/10.18632/ oncotarget. 17236
20. Шарапова Н. А. Выделение гликопротеида из фиксированного штамма вируса бешенства штамма «Москва 2532» и конструирование на его основе диагностикума для дот-иммуноанализа / Н. А. Шарапова, М. Н. Киреев, Е. Г. Абрамова и др. // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. - 2012. - № 5 (87). - Т. 1. - С. 347-350
21. Nadyrova A. I. Obtaining rabies virus purified antigen / A. I. Nadyrova, M. A. Efimova, A. G. Mukhamedzhanova [et al.] // Asian Journal of Pharmaceutics. - 2018. - № 12 (4). - P. 1299-1303
22. Пат. 2694836 Российская Федерация, МПК7 А61К 39/205, А61Р 31/12. Способ получения антигена вируса бешенства для серологиче ской диагностики / Ахмадеев Р. М., Ефимова М. А., Чернов А. Н. и др., заявитель и патенто обладатель ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ». - № 2018144597. заявл. 14.12.18, опубл. 17.07.19
23. Takagi J. Semi-Quantitative Measurement of Proteins by Dot Blotting. 2000
24. Мухамеджанова А. Г. Оптимизация схем гипе риммунизации лабораторных животных высо коочищенным антигеном вируса бешенства / А. Г. Мухамеджанова, Р. М. Ахмадеев, Н. Р. Мифта хов, Ш. М. Насыров и др. // Ветеринария. - 2020. - № 10. - С. 25-29
25. Ефимова М. А. Оценка пригодности выделен ных антирабических иммуноглобулинов для ме тодов лабораторной диагностики: ИФА и МФА / М. А. Ефимова, А. Г. Мухамеджанова, А. Н. Чернов и др. // Ветеринарный врач. - 2018. - № 4. - С. 3-7
Рецензия
Для цитирования:
Ахмадеев Р.М., Арсланова А.Ф., Мифтахов Н.Р., Насыров Ш.М., Ефимова М.А., Самерханов И.И. ПРИМЕНЕНИЕ ДОТ-ИММУНОАНАЛИЗА ДЛЯ ИНДИКАЦИИ РАБИЧЕСКОГО АНТИГЕНА В ПАТОЛОГИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ. Ветеринарная патология. 2021;(2):21-25. https://doi.org/10.25690/VETPAT.2021.31.40.007
For citation:
Akhmadeev R.M., Arslanova A.F., Miftahov N.R., Nasirov S.M., Efimova M.A., Samerkhanov I.I. APPLICATION OF DOT-IMMUNOASSAY FOR INDICATION OF RABIES ANTIGEN IN PATHOLOGICAL MATERIAL. Russian Journal of Veterinary Pathology. 2021;(2):21-25. (In Russ.) https://doi.org/10.25690/VETPAT.2021.31.40.007
Послать статью по эл. почте 