Микробиологический контроль инкубации

Введение. Микробиологический мониторинг занимает особое место в обеспечении эпизоотологического благополучия птицехозяйств, позволяя прогнозировать распространение инфекционных болезней птиц. Изучив микробиологический профиль в период инкубации и определив чувствительность выделенных микроорганизмов, к моменту вывода можно подобрать «рабочий» антибактериальный препарат. Это позволит своевременно профилактировать инфекционные болезни. Начиная исследования с первого биологического контроля (7,5 сутки инкубации), в случае высокой микробной обсеменённости в процесс инкубации, можно предпринять дополнительные меры профилактики инфекционных болезней: скорректировать схему обработки инкубационных яиц или цыплят на выводе, подобрать препарат в зависимости от полученных результатов. Поэтому целью данного исследования явилось определение видового и количественного состава патогенной и условно-патогенной микрофлоры при инкубации яиц мясных кроссов кур в условиях фермерского птицеводческого хозяйства Омской области.
Материалы и методы. Исследовано 240 проб воздуха и 40 проб соскобов со слизистой верхних дыхательных путей выведенных цыплят-бройлеров и 60 проб погибших эмбрионов. Обсеменённость воздуха инкубационных шкафов устанавливали седиментационным методом на 7,5; 11,5; 18,5 сутки, а выводного — на 21,5 сутки инкубации.
Результаты исследования. При исследовании проб воздуха в инкубационных шкафах обнаружено преобладание стафилококков и энтерококков, в выводных шкафах — бактерий группы кишечной палочки (БГКП) и энтерококков. При проведении анализа соскобов верхних дыхательных путей цыплят-бройлеров и материала от погибших эмбрионов доминирующими видами оказались микроорганизмы семейства Enterococcaceae и Staphylococcaceae, в меньшей степени — Enterobacteriaceae. Большое количество микроорганизмов определили в соскобах: E. faecalis (38,5 %), S. aureus (31,6 %), E. agglomerans (11,4 %), E. coli (8,8 %), C. freundii (7 %), P. aeruginosa (0,9 %), E. faecium (0,9 %). При обследовании погибших эмбрионов наиболее часто выделяли E. faecalis (44,7 %), S. aureus (25,5 %), E. coli (12,8 %). Среди ассоциаций ведущее место как при исследовании соскобов, так и при исследовании погибших эмбрионов, занимали S. aureus / E. Faecalis и S. aureus / E. faecalis / E. coli.
Обсуждение и заключение. Проведенные исследования, позволившие определить видовой и количественный состав патогенной и условно-патогенной микрофлоры при инкубации яиц мясных кроссов, показал, что микробиоценоз верхних дыхательных путей напрямую связан с микрофлорой воздуха. Проводя регулярный мониторинг воздушной среды в инкубаторе, можно контролировать перезаражение цыплят на выводе, исследуя при этом только пробы воздуха. Это более доступно, менее затратно и травматично для самой птицы. Понимание реальной эпизоотической ситуации позволяет определять наиболее эффективные меры по снижению микробной обсеменённости в период инкубации, а также, в случае возникновения бактериальной инфекции в стаде, подобирать оптимальный антибактериальный препарат.

1. Abdullaeva A.M., Blinkova L.P., Pakhomov Yu.D. Use of Commercial and UV-induced Phages for Protection of Chicken Mince from Contamination by Microorganisms. В: RAP 2019: Book of abstracts international conference on radiation applications. Belgrade: Serbia; 2019. Т. 4. С. 102–106.

2. Hammond C.L., Simbi B.H., Stickland N.C. In Ovo Temperature Manipulation Influences Embryonic Motility and Growth of Limb Tissues in the Chick (Gallus Gallus). Journal of Experimental Biology. 2007;210:2667–2675. https://doi.org/10.1242/jeb.005751

3. Czarick M., Wicklena G. 15 cost-saving ideas for poultry housing. Poultry International. 2009;48(4):18–20.

4. Кузнецов А.Ф., Тюрин В.Г., Семенов В.Г., Никитин Г.С. Зоогигиена и ветеринарная санитария. Санкт-Петербург: Квадро; 2021. 384 с

5. Новикова О.Б., Павлова М.А. Система контроля бактериальных болезней птиц в современных условиях промышленного птицеводства. Инновации в АПК: проблемы и перспективы. 2017;4(16):153–159.

6. Сунцова О.А., Шарипов Р.И., Лыско С.Б., Задорожная М.В., Портянко А.В. Микрофлора инкубаториев и ее чувствительность к антибактериальным препаратам. В: Материалы VII Казахстанского Международного форума птицеводства. Нур-Султан; 2019. С. 74–83.

7. Портянко А.В., Лыско С.Б., Задорожная М.В., Сунцова О.А., Красиков А.П. Видовой и количественный состав микроорганизмов в инкубаторе. Птицеводство. 2019;7–8:70–74. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2019-68-7-8-70-74

8. Монстакова Т.В., Азарнова Т.О., Кочиш И.И. Роль оптимизации метаболических процессов в системе снижения отходов инкубации. Птицеводство. 2020;7–8:44–50. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2020-69-7-8-44-50

9. Aksu H., Bostan K., Aydin A., Yildirim M., Keles O. Disinfection of Eggshells Contaminated with Salmonella Enteritidis. Medycyna Weterynaryjna. 2006;62(6):641–643.

10. Evans D.G., Evans D.J. New Surface-associated Heat-labile Colonization Factor Antigen (CFA/II) Produced by Enterotoxigenic Escherichia Coli of Serogroups O6 And O8. Infection and Immunity. 1978;21(2):638–647. https://doi.org/10.1128/iai.21.2.638-647.1978

11. Hart C.A. Diagnosis of Enteric Escherichia Coli Infections. Medical Laboratory Sciences. 1992;49(3):203.

12. Lourens A., van den Brand H., Meijerhof R. Effect of Eggshell Temperature During Incubation on Embryo Development, Hatchability, and Posthatch Development. Poultry Science. 2005;84(6):914–920.

13. Joseph N.S., Lourens A., Morau E.T. Effect of Suboptimal Eggshell Temperature During Incubation on Broiler Chick Quality Live, Performance and Further Processing Yield. Poultry Science. 2006;85(5):932–938. https://doi.org/10.1093/ps/85.5.932

14. Сахно Н.В., Буяров В.С., Тимохин О.В., Ватников Ю.А., Туткышбай И.А., Михеева Е.А. и др. Ветеринарная санитария. Санкт-Петербург: Лань, 2021. 172 с.

15. Щербатов В.И., Смирнова Л.И., Щербатов О.В. Инкубация яиц сельскохозяйственной птицы. Монография. Краснодар: Куб ГАУ; 2015. 184 с.

16. Госманов Р.Г., Колычев Н.М., Барсков А.А. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии: учебное. пособие. Омск: Издательский дом Лео; 2008. 312 с.

17. Колычев Н.М., Госманов Р.Г. Ветеринарная микробиология и иммунология: учебник. Омск: Издательство ОмГАУ.; 1996. 552 с.

18. Андросов Ф.З., Беляев И.Я., Клочко Р.Т., Ковалерчук Л.И., Коромыслова Г.Л., Корчагин А.И., и др. Справочник ветеринарного лаборанта. М.: Колос.; 1981. 248 с.

19. Гржибовский А.М., Унгуряну Т.Н. Анализ биомедицинских данных с использованием пакета статистических программ SPSS: учебное пособие. Архангельск: Издательство Северного государственного медицинского университета; 2017. 293 с.